服務(wù)介紹：

氨基酸(AA)檢測試劑盒(茚三酮比色法)(Amino Acid Assay kit)檢測原理是在弱酸條件下，氨基酸與茚三酮共熱情況下能定量的產(chǎn)生藍紫色的二酮茚胺(又稱(chēng)Ruhemans紫)，其吸收峰在波長(cháng)570nm處，在一定范圍內顏色深淺(即吸光度)與氨基酸濃度成正比，該試劑盒主要用于檢測植物組織、血清、尿液、食品、藥品等中的總游離氨基酸含量。

實(shí)驗流程:

1、 準備樣品

①植物樣品：取新鮮植物組織，稱(chēng)取0.4g，按植物組織：AA Lysis buffer(1×)=0.4g：2.0ml的比例加入AA Lysis buffer(1×)勻漿或研磨，用無(wú)氨蒸餾水稀釋至40ml，混勻，

②血漿、血清和尿液樣品：血漿、血清按照常規方法制備后可以直接用于本試劑盒的測定，

③細胞或組織樣品：取恰當細胞或組織裂解液，如有必要用AA Lysis buffer(1×)進(jìn)行勻漿，1000g離心5min，留取上清即為氨基酸粗提液

④高濃度樣品：如果樣品中含有較高濃度的氨基酸，可以使用AA Lysis buffer(1×)進(jìn)行恰當的稀釋。

2、配制茚三酮顯色液: 取0.3g茚三酮，溶解于50ml茚三酮稀釋液，攪拌或超聲處理至完全溶解，即為茚三酮顯色液。

3、配制茚三酮工作液: 取適量的茚三酮顯色液、AA Assay buffer，按茚三酮顯色液：AA Assay buffer=35：3的比例混合，即為茚三酮工作液

4、配制維生素C工作液: 取出1支維生素C，準確溶解于30ml無(wú)氨蒸餾水，混勻

5、配制系列氨基酸標準溶液：取出氨基酸標準(50μg/ml)恢復至室溫，用無(wú)氨蒸餾水將其稀釋至10μg/ml，然后按下表繼續稀釋?zhuān)?/span>

6、AA加樣：按照下表設置空白管、標準管、測定管，溶液應按照順序依次加入

 7、AA測定：加60%乙醇2.1ml，混勻；立即以空白調零，分光光度計(比色杯光徑1cm)測定標準管、測定管570nm處吸光度(記為A_標準、A_測定)。

 實(shí)驗結果：

全自動(dòng)生化儀檢測后導出結果，結果由EXCEL形式發(fā)送。

送樣運輸要求：

1、動(dòng)植物組織樣本(干冰運輸)

準確稱(chēng)取動(dòng)物組織重量按重量(mg)：體積(ul)=1:9的比例加入9倍體積的勻漿介質(zhì)(推薦0.86%或0.9%的生理鹽水)，冰水浴條件下，機械勻漿，制備成10%的勻漿液，2500~3000轉/分鐘，離心10分鐘，取上清液進(jìn)行測定。

2、血清樣本(干冰運輸)

全血標本請于室溫放置2小時(shí)或4℃過(guò)夜（GLU檢測請勿全血樣本放置過(guò)夜取血清）后于2-8℃ 3000轉/分離心15min，取上清即可立即檢測;或進(jìn)行分裝，并將標本放于-20℃或-80℃保存，但應避免反復凍融。解凍后的樣本應再次離心，然后檢測。

3、血漿樣本(干冰運輸)

可用肝素作為抗凝劑，標本采集后30分鐘內于2-8℃3000轉/分離心15min，取上清即可立即檢測;或進(jìn)行分裝，并將標本放于-20℃或-80℃保存，但應避免反復凍融。解凍后的樣本應再次離心，然后檢測。

4、細胞樣本

貼壁細胞：將細胞用PBS沖洗2次后，用細胞刮將細胞小心刮下來(lái)，將培養液3000轉/分，離心10min。棄上清留細胞沉淀，干冰運輸。

懸浮細胞：將培養液3000轉/分，離心10min。棄上清留細胞沉淀，干冰運輸。

細胞上清：標本于2-8℃，3000轉/分離心15min取上清，上清立即用于實(shí)驗，或分裝后于-20℃或-80℃保存。避免反復凍融。

僅供科研用途，不可用于臨床診斷！